在进行蛋白质印迹(Western Blot)、免疫沉淀(IP)或亲和纯化等实验时,生物素探针的溶解是至关重要的一步。不正确的溶解方式可能导致探针失效、背景增高或实验结果不重复。本文将系统性地为您讲解生物素探针的正确溶解方法,并解答您可能遇到的所有相关问题。
生物素探针(如NHS-LC-Biotin、Sulfo-NHS-SS-Biotin等)通常是化学修饰的小分子,其溶解性直接影响到它与目标蛋白(通常是细胞表面或裂解液中的蛋白质)的有效结合。
因此,正确的溶解是成功实验的基石。
请务必在阅读产品说明书后进行操作,因为不同修饰的探针可能有细微差别。以下是通用且可靠的步骤:
1. 选择正确的溶剂
2. 计算与配制储存液
建议浓度:配制一个较高浓度的储存液,例如 10-50 mM。
计算示例:假设您有一管1 mg的NHS-LC-Biotin(分子量:454.5 g/mol)。
操作步骤:
a. 将生物素探针粉末管和DMSO在室温下平衡片刻,避免水汽凝结。
b. 短暂离心,使粉末沉至管底。
c. 缓慢加入计算好体积的无水DMSO。
d. 轻柔涡旋或上下吹打直至完全溶解。切勿剧烈涡旋,以免引入过多水分和氧气。
e. 确认管底无可见颗粒,溶液澄清。
3. 稀释与使用
水溶性探针(如Sulfo-NHS-SS-Biotin):
长链(LC) vs. 短链探针:
Q1:探针加入DMSO后,管壁或底部仍有少量不溶物,怎么办?
Q2:配好的储存液可以保存吗?
Q3:探针溶解后加入到反应体系中,溶液变浑浊了,是什么原因?
Q4:实验背景很高,可能与探针溶解有关吗?
Q5:除了DMSO,还能用其他溶剂吗?
成功溶解生物素探针的秘诀在于: