在蛋白质研究、免疫检测和亲和纯化等领域,生物素-链霉亲和素系统因其近乎不可逆的高亲和力而被广泛应用。然而,正是这种强大的结合力,也带来了一个关键的挑战——非特异性结合。当您搜索“封闭生物素”时,您很可能正在实验中遇到背景高、信噪比低的问题。本文将全面解析封闭生物素的原理、方法和最佳实践,助您彻底攻克这一技术难点。
简单来说,“封闭生物素”的目的是为了阻断样品或实验系统中 内源性生物素 或 未标记的生物素结合位点,从而消除它们带来的背景干扰。
1. 问题的根源:内源性生物素
在许多生物样本中,尤其是组织切片(如肝脏、肾脏、乳腺)、细胞裂解液以及血清中,天然存在含生物素的酶(如羧化酶)。在进行免疫组化或免疫荧光实验时,后续加入的链霉亲和素标记物会 indiscriminately(不加区分地)与这些内源性生物素结合,导致特异性信号被高背景噪音淹没,甚至出现假阳性结果。
2. 问题的核心:未占用的结合位点
在使用生物素化抗体进行检测时,一个链霉亲和素分子有四个结合位点。一个位点与您的生物素化抗体结合后,其余三个位点仍然“空闲”。如果不将其封闭,这些空闲位点可能非特异性地结合样品中的其他成分,同样会增加背景。
因此,封闭生物素是确保实验特异性、提高信噪比的关键步骤,尤其在IHC、IF、Western Blot和ELISA等实验中至关重要。
封闭生物素主要分为两种策略:预先封闭 和事后封闭。
1. 预先封闭:阻断样品中的内源性生物素
这种方法适用于免疫组化等实验,在加入一抗之前进行。
2. 事后封闭:饱和链霉亲和素/亲和素的空闲位点
这种方法在加入链霉亲和素标记物之前或之后进行,用于封闭其未结合位点。
D-生物素:
商品化生物素封闭试剂盒:
Q1: 我已经用了血清封闭,为什么还要封闭生物素?
A: 血清封闭(如BSA、脱脂牛奶)主要目的是减少蛋白质之间的非特异性疏水或离子相互作用。而生物素与链霉亲和素的结合是高度特异性的亲和反应,血清蛋白无法阻断。因此,两种封闭必须同时进行,互为补充。
Q2: 封闭生物素后背景仍然很高,可能是什么原因?
A: 可能的原因有:
Q3: 可以使用生物素类似物吗?
A: 强烈建议使用D-生物素,避免使用生物素类似物。因为链霉亲和素对其天然配体D-生物素的亲和力最高,类似物的封闭效率可能不理想。