在免疫组化(IHC)、免疫荧光(IF)或ELISA等利用生物素-亲和素系统(BAS)的实验中,研究人员常常会遇到一个令人困扰的问题:高背景染色、非特异性信号,从而导致结果不准确。此时,“生物素阻断”或“亲和素阻断”便成为了解决这些问题的关键步骤。如果您正在搜索这个关键词,您的需求可能主要集中在以下几个方面:为什么需要阻断?如何正确进行操作?以及遇到问题时该如何解决? 本文将为您全面解析。
生物素-亲和素系统因其具有超高亲和力(Ka≈10^15 M⁻¹),被誉为“天然级放大系统”,被广泛应用于增强检测信号。然而,这种强大的结合能力也是一把“双刃剑”,正是内源性生物素的存在导致了问题的出现。
内源性生物素的干扰:
许多组织和细胞(如肝脏、肾脏、乳腺、脂肪组织、线粒体丰富的细胞等)天然含有生物素。在实验过程中,这些内源性生物素会与外源添加的链霉亲和素(Streptavidin)或亲和素(Avidin) 探针直接结合,从而产生强烈的非特异性背景染色,掩盖了真正的目标信号。
亲和素的非特异性结合:
亲和素是一种碱性糖蛋白(pI ~10.5),在某些情况下会与组织中的阴离子基团(如磷脂)发生非特异性离子结合,进一步增加背景。
因此,生物素阻断的目的就是为了预先饱和组织切片或细胞样本中的内源性生物素结合位点,防止后续实验步骤中标记的亲和素/链霉亲和素与之结合,从而获得干净、特异、可信的实验结果。
生物素阻断通常在一抗孵育之后、生物素标记的二抗(或探针)孵育之前进行。以下是经典的两步法操作步骤:
【实验前准备】
【操作步骤】
问:为什么我已经做了阻断,背景还是很高?
问:阻断步骤会导致目标信号减弱吗?
问:所有实验都必须做生物素阻断吗?
问:除了化学阻断,还有其他方法吗?
生物素(亲和素)阻断是一项简单却至关重要的实验技术,是确保基于BAS的实验结果特异性和准确性的关键。成功的关键在于: